Acinetobacter baumannii (A. baumannii) ha desarrollado varios mecanismos de resistencia. Esta bacteria ha sido señalada como origen de múltiples brotes epidémicos. El objetivo de este estudio es investigar el uso de bombas de eflujo y mutaciones genotípicas asociadas a la resistencia a quinolonas como mecanismos de resistencia en cepas de A. baumannii aisladas en un hospital terciario. Se investigó un total de 103 aislados de A. baumannii tras su identificación y análisis de susceptibilidad antimicrobiana mediante VITEK2 seguido de la amplificación por PCR de blaOXA-51. Se realizó la amplificación convencional por PCR de los genes de la bomba de eflujo AdeABC (adeB, adeS y adeR) y de resistencia a quinolonas (parC y gyrA), seguida de la PCR cuantitativa en tiempo real de los genes de la bomba de eflujo AdeABC. La evaluación fenotípica de la expresión de la bomba de eflujo se realizó determinando la diferencia entre la CMI de tigeciclina antes y después de la exposición a un inhibidor de la bomba de eflujo. Se utilizó el método de secuenciación de Sanger para secuenciar los amplicones de parC y gyrA. Se trazó un árbol filogenético utilizando MEGA 4.0 para evaluar el parentesco evolutivo de las cepas. Todos los aislados recogidos eran blaOXA-51 positivos. Se observó una elevada resistencia a casi todos los antibióticos ensayados. En el 75% de los aislados se encontró la bomba de eflujo como mecanismo de resistencia. El estudio detectó una mutación del gen parC en el 60
y la mutación del gen gyrA en el 85%, mientras que el 37% de los aislados presentaban mutaciones en ambos genes. Se notificó una distancia evolutiva mínima entre los aislados. Se demostró que el uso del sistema de bomba de eflujo AdeABC como mecanismo activo de resistencia, combinado con una mutación puntual principalmente en gyrA, contribuye a ampliar el espectro de resistencia de los aislados de A. baumannii.
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