Objetivo. Introducir métodos adicionales para detectar y cuantificar patógenos individuales en la formación de biopelículas complejas sobre un material dental antibacteriano. Materiales y métodos. Se fabricaron un material dental convencional (ST) y un composite dental antibacteriano (B). In vitro: las muestras se incubaron con una mezcla de colonizadores tempranos. La adhesión bacteriana se analizó mediante TaqMan PCR después de 8/24 h. In situ: se realizó TaqMan PCR y 16S rRNA Next Generation Sequencing (NGS). Resultados. In vitro: después de 8 h de incubación, B estaba cubierto por el 58,6% de la cantidad de bacterias que estaban adheridas a ST. Después de 24 horas, la cantidad de bacterias adheridas a la ST se mantuvo constante en la ST y sólo fue ligeramente inferior en la B. In situ: después de 8 h, la cantidad de A. viscosus y S. mitis adheridos era prominente en la ST y se redujo en la B. La NGS reveló que S. sanguinis, S. parasanguinis y Gemella sanguinis eran las especies principalmente adheridas, siendo S. sanguinis dominante en la ST y S. parasanguinis y G. sanguinis dominantes en la B. Conclusiones. La formación inicial de la biopelícula se vio alterada por B. Se observó un cambio entre actinomicetos y estreptococos in situ. La PCR TaqMan y la NGS del ARNr 16S revelaron resultados comparables in situ y demostraron la utilidad de la NGS para caracterizar comunidades bacterianas complejas.
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